NGHIÊN CỨU MÔ HÌNH SUY GIẢM SINH SẢN TRÊN CHUỘT NHẮT TRẮNG ĐỰC GÂY BÉO PHÌ BẰNG CHẾ ĐỘ ĂN GIÀU LIPID

Nguyễn Hoàng Tín 1,2, Nguyễn Minh Tiến 1, Lê Thị Diễm Tiên 1, Phùng Minh Thư 1,2, Nguyễn Phúc Duy1,2, Nguyễn Văn Luân 1,2, Trần Thúy Huỳnh 3, Trần Thái Thanh Tâm 1,2,
1 Trường Đại học Y Dược Cần Thơ
2 Bệnh viện Trường Đại học Y Dược Cần Thơ
3 Bệnh viện Phụ Sản Cần Thơ

Nội dung chính của bài viết

Tóm tắt

Mục tiêu: Đánh giá hình thái cơ quan sinh dục và chức năng sinh tinh của chuột nhắt trắng đực béo phì. Đối tượng và phương pháp: Chuột nhắt trắng đực (Swiss albino) được chia thành 2 lô (12 con/lô) gồm: lô NFD (Normal-fat diet) và lô HFD (High-fat diet). Sau 6 tuần gây béo phì, chuột được thực hiện đánh giá các chỉ số gồm khối lượng các cơ quan sinh dục, tinh dịch đồ, nồng độ testosteron huyết thanh, đường kính ống sinh tinh. Kết quả: Chuột ở lô HFD có khối lượng tinh hoàn và mào tinh thấp hơn lô NFD (p<0,05). Tỷ lệ tinh trùng tiến tới, không tiến tới và mật độ tinh trùng lô HFD thấp hơn lô NFD (p<0,001). Ngoài ra, tỷ lệ tinh trùng bất động và tinh trùng dị dạng lô HFD cao hơn lô NFD (p<0,001). Nồng độ testosteron huyết thanh của chuột lô HFD cao hơn lô NFD 150% (p=0,001). Chuột lô HFD có đường kính ống sinh tinh thấp hơn chuột lô NFD 8,35% (p<0,05). Kết luận: Sau 6 tuần gây mô hình bằng chế độ ăn giàu lipid, chuột béo phì có biểu hiện suy giảm sinh sản.

Chi tiết bài viết

Tài liệu tham khảo

1. Nguyễn Hoàng Tín, Lê Thị Diễm Tiên, Nguyễn Minh Tiến, Phùng Minh Thư, Nguyễn Thị Đặng, Trần Thị Thu Thảo, Trần Thái Thanh Tâm (2022). Tình trạng tăng đường huyết và rối loạn lipid máu trên mô hình chuột nhắt trắng đực gây béo phì bằng thức ăn giàu lipid. Tạp chí Sinh lý học Việt Nam, 26(2), 16-23.
2. Ghorbanlou M., Rostamkhani S., Shokri S., Mahmazi S., Fallah R., Moradi F., et Nejatbakhsh R. (2020). Possible ameliorating effects of Glycyrrhiza glabra (Licorice) on the sperm parameters in rats under high fat diet. Endocrine Regulations, 54(1), 22-30.
3. Gómez-Elías M. D., et al. (2019). Association between high-fat diet feeding and male fertility in high reproductive performance mice. Scientific reports, 9(1), 1-9.
4. Izquierdo A. C., Reyes A. E. I., Muñiz A. R. O., Mosqueda M. D. L. J., González J. A. G., Liera J. E. G., Lang G. R., Crispín R. H., Mancera A. E. V., Aparico P. S. et Sánchez R. S. (2020). Effect of oxidative stress on sperm cells. Glutathione System and Oxidative Stress in Health and Disease, 10, 1-20.
5. Koppers A. J., Garg M. L., et Aitken R. J. (2010). Stimulation of mitochondrial reactive oxygen species production by unesterified, unsaturated fatty acids in defective human spermatozoa. Free radical biology and medicine, 48(1), 112-119.
6. Machida T., Yonezawa Y., et Noumura T. (1981). Age-associated changes in plasma testosterone levels in male mice and their relation to social dominance or subordinance. Hormones and Behavior, 15(3), 238-245.
7. Palmer N. O., Bakos H. W., Fullston T., et Lane M. (2012). Impact of obesity on male fertility, sperm function and molecular composition. Spermatogenesis, 2(4), 253-263.
8. Yang F. L., Wei Y. X., Liao B. Y., Wei G. J., Qin H. M., Pang X. X., et Wang J. L. (2020). Effects of Lycium barbarum polysaccharide on endoplasmic reticulum stress and oxidative stress in obese mice. Frontiers in Pharmacology, 11, 742, 1-11.